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Western blot 實驗技術

時間:2022-03-08 瀏覽:

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Western blot 實(shí)驗技術


       Western Blot即免疫印跡法(fǎ)(蛋白質印(yìn)跡法)是分子生(shēng)物學、生物化學和免疫遺傳學中常用的一種實驗方法(fǎ)。與Southern Blot、Northern Bolt類似,不同的是,Southern Blot與Northern Blot檢測的物質分別為DNA、RNA,Western Blot檢(jiǎn)測的是蛋白質。

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原理

       ●Western Blot:采用的是聚(jù)丙烯酰胺凝膠電泳,被檢測物  是蛋白質,“探針”是抗體,“顯色”用標記的(de)二抗。

      ● 經(jīng)過PAGE分(fèn)離的蛋白質樣品,轉移到(dào)固相載體(例如硝酸(suān)纖維素薄膜)上,固相(xiàng)載體以非共(gòng)價鍵形式吸附蛋白(bái)質(zhì),且能保持電泳分離的多肽類型及其生(shēng)物學活性不變。以固相載體上的蛋白質或多肽作為抗原,與對應的抗(kàng)體起免疫反應,再與酶或同位素標記的第(dì)二抗體起反應,經過底物顯色或放射自顯影(yǐng)以檢測電泳分離的特異性目的基因(yīn)表達的蛋白成分。


Western Blot一般流程

蛋白樣品的獲取

SDS聚丙(bǐng)烯酰胺凝膠電泳

轉膜

封閉

洗滌

一抗雜交

洗(xǐ)滌

二抗雜交

洗(xǐ)滌

底物顯色

封閉

       ● 免疫印(yìn)跡(jì)法所檢測的蛋白樣品主要來自於人工(gōng)構建的細胞株係,包括微生物(wù)與動植物細(xì)胞,也可從(cóng)實驗動物體獲得。

       ● 將樣本裂解後,采(cǎi)用(yòng)有機溶劑或水溶法分離(lí)總蛋白後,再進行層析或點洗(xǐ)脫製備目的蛋白後,在蛋白中加入等量Loading Buffer煮沸變性(xìng)就可以進行SDS-PAGE凝膠電泳的步驟了。

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SDS聚丙烯酰胺凝膠電(diàn)泳

       ● SDS(十二烷基硫酸鈉) 是一種離子性(xìng)的界麵活性劑,它有強離子性的硫酸根離子也帶(dài)有疏水性的長碳鏈。當 SDS 與蛋白質混合時,它會(huì)以其碳鏈與蛋白質之疏水性胺基酸結合將蛋白質包起來,而以硫酸根離子外(wài)露與水分子作用。大多數蛋白質和 SDS 的平均(jun1)結合量是 1:1.4 (以重量(liàng)為單位),而蛋白質和SDS結合後,由於 SDS 帶強負價,使蛋(dàn)白質原先的帶電價微(wēi)不足道,且(qiě)每單位(wèi)重量的蛋白質帶電價一(yī)致,所以決定不同蛋白的泳動速率就隻剩下分子大小一項因素。

具體步驟

製膠

純淨水

丙烯酰胺和N,N’-

亞甲雙丙烯酰(xiān)胺  

SDS

Tris-HCL

四(sì)甲基乙(yǐ)二胺

過硫酸銨(APS)

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加樣

預電泳後依(yī)次加入標準品和待分析樣品,注意加樣時間要盡量短,以免樣品(pǐn)擴散,同時為了方便區分多塊凝(níng)膠,可以按照不同(tóng)順序加入MARK。

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電泳

加樣完畢,蓋好電泳(yǒng)槽的蓋子並選擇適(shì)當的電壓進行電泳。電泳完成後便可以從電泳槽中取出(chū)凝膠,根據不同目的選擇進行免疫印跡檢測(cè)或是直接使用考馬斯亮藍染色,脫(tuō)色後進(jìn)行分析。 

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轉膜

半(bàn)幹法(用恒流(liú))

將凝膠和固相基質像三明(míng)治一(yī)樣加在用緩衝液濕潤濾紙之(zhī)間(jiān),電(diàn)轉10-30min。

濕法

將凝膠和固相基質夾在濾紙(zhǐ)中間,浸泡在(zài)轉移裝置的緩衝液中,電轉1h或(huò)過夜。








封閉

封(fēng)閉一般采用(yòng)異源性蛋白質或去汙劑,常用的有20%BSA(牛血清蛋白(bái)),10%馬血清以及5% 脫脂牛奶等(děng)。

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孵育

把硝酸纖維素濾膜放在密閉塑料(liào)盒中,根據(jù)濾膜麵積以0.1ml/cm2的量加入一抗溶液與濾膜溫育-回收一抗溶液,洗滌-加入二抗溶液,洗滌-回(huí)收二抗。短時間多次洗膜較長時間少次洗膜更有效。

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顯色

辣根(gēn)過氧化物酶-DAB法

辣根過(guò)氧化物酶-ECL法

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SDS聚丙烯酰(xiān)胺凝膠電泳

常見問題分析

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1、製作凝(níng)膠時,凝膠凝結不完全(quán)。

2、製作凝(níng)膠時,凝膠底部出現氣泡。

第1、2種情況主要問題在於凝膠製作,凝膠凝結不充分,電泳時會導致(zhì)泳(yǒng)道變形扭曲,形成上凹條(tiáo)帶;凝膠製作時混入氣泡,會形(xíng)成局部差異電壓,形成上凸條帶。

3、電(diàn)泳樣品放置時間過長,蛋(dàn)白發生沉降。

4、轉(zhuǎn)膜時在膜與膠之間存在氣泡,蛋白轉移不完全導致。

5、樣品中離子濃度高(gāo),電泳時對蛋白樣(yàng)品(pǐn)產生擠壓。

6、樣品濃度高或上樣量過大,導致(zhì)條帶擴散。

7、與情況(kuàng)3類似,但拖尾部分(fèn)主要是小(xiǎo)顆粒(lì)不容物。

       ●第3、5、6種(zhǒng)情況主要問題在於樣品,樣品製備完成後盡快煮樣、電泳、轉模可以有效避免情況3;透析或適(shì)當稀釋可以降低樣品的(de)離子強度,從而(ér)解決情況5;上樣前檢測(cè)樣品濃度,或是在出現情況6後對樣品進行適(shì)當稀釋可以避免情況6。第7種情況較為特殊(shū),樣品中難溶性小顆(kē)粒來源較多,有(yǒu)實驗環(huán)境(jìng)中(zhōng)的灰塵,粉麵醫用乳膠手套,製膠過程(chéng)中梳(shū)齒、玻璃片等器物上的汙染物。電(diàn)泳上樣前對(duì)樣品進行離心可(kě)以有效清除樣品中的難溶性微粒,離心對情況3中的沉降蛋白(bái)也有效果;清洗製膠器物則(zé)可以避免製膠過程(chéng)中的難溶性小顆粒汙染;電泳前對凝膠進行預電泳也可以去除大部分(fèn)凝膠中的難溶性顆粒。

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